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domenica 12 settembre 2021

La proteina "Magnetizzata" geneticamente modificata controlla a distanza cervello e comportamento






Il nuovo metodo "Badass" utilizza una proteina magnetizzata per attivare le cellule cerebrali in modo rapido, reversibile e non invasivo


di Mo Costandi

Ricercatori negli Stati Uniti hanno sviluppato un nuovo metodo per controllare i circuiti cerebrali associati a comportamenti animali complessi, utilizzando l'ingegneria genetica per creare una proteina magnetizzata che attiva a distanza gruppi specifici di cellule nervose.

Capire come il cervello genera il comportamento è uno degli obiettivi finali delle neuroscienze e una delle sue domande più difficili. Negli ultimi anni, i ricercatori hanno sviluppato una serie di metodi che consentono loro di controllare a distanza gruppi specifici di neuroni e di sondare il funzionamento dei circuiti neuronali.

Il più potente di questi è un metodo chiamato optogenetica , che consente ai ricercatori di attivare o disattivare popolazioni di neuroni correlati su una scala temporale millisecondo per millisecondo con impulsi di luce laser. Un altro metodo recentemente sviluppato, chiamato chemogenetica , utilizza proteine ​​ingegnerizzate che vengono attivate da farmaci di design e possono essere mirate a specifici tipi di cellule.

Sebbene potenti, entrambi questi metodi presentano degli svantaggi. L'optogenetica è invasiva, richiede l'inserimento di fibre ottiche che forniscono gli impulsi luminosi nel cervello e, inoltre, la misura in cui la luce penetra nel denso tessuto cerebrale è fortemente limitata. Gli approcci chemiogenetici superano entrambe queste limitazioni, ma in genere inducono reazioni biochimiche che impiegano diversi secondi per attivare le cellule nervose.

La nuova tecnica, sviluppata nel laboratorio di Ali Güler presso l'Università della Virginia a Charlottesville, e descritta in una pubblicazione online anticipata sulla rivista Nature Neuroscience , non è solo non invasiva, ma può anche attivare i neuroni in modo rapido e reversibile.

Diversi studi precedenti hanno dimostrato che le proteine ​​delle cellule nervose che vengono attivate dal calore e dalla pressione meccanica possono essere geneticamente modificate in modo che diventino sensibili alle onde radio e ai campi magnetici , attaccandole a una proteina che immagazzina il ferro chiamata ferritina o a particelle paramagnetiche inorganiche . Questi metodi rappresentano un importante progresso – sono già stati utilizzati, ad esempio, per regolare i livelli di glucosio nel sangue nei topi – ma coinvolgono più componenti che devono essere introdotti separatamente.

La nuova tecnica si basa su questo lavoro precedente, e si basa su una proteina chiamata TRPV4, che è sensibile sia temperatura e forze traenti . Questi stimoli aprono il suo poro centrale, permettendo alla corrente elettrica di fluire attraverso la membrana cellulare; questo evoca impulsi nervosi che viaggiano nel midollo spinale e poi fino al cervello.

Güler e i suoi colleghi hanno pensato che le forze magnetiche di torsione (o rotanti) potrebbero attivare TRPV4 aprendo il suo poro centrale, e così hanno usato l'ingegneria genetica per fondere la proteina nella regione paramagnetica della ferritina, insieme a brevi sequenze di DNA che segnalano alle cellule di trasportare proteine ​​alla membrana delle cellule nervose e inserirle in essa.
Manipolazione in vivo del comportamento del pesce zebra mediante Magneto. Le larve de pesce zebra mostrano un comportamento di avvolgimento in risposta a campi magnetici localizzati. Da Wheeler et al (2016).

Quando hanno introdotto questo costrutto genetico nelle cellule renali embrionali umane che crescono in piastre di Petri, le cellule hanno sintetizzato la proteina "Magnetica" e l'hanno inserita nella loro membrana. L'applicazione di un campo magnetico ha attivato la proteina TRPV1 ingegnerizzata, come evidenziato da aumenti transitori della concentrazione di ioni calcio all'interno delle cellule, che sono stati rilevati con un microscopio a fluorescenza.

Successivamente, i ricercatori hanno inserito la sequenza del DNA di Magneto nel genoma di un virus, insieme al gene che codifica per la proteina fluorescente verde e sequenze di DNA regolatorie che fanno sì che il costrutto venga espresso solo in determinati tipi di neuroni. Hanno quindi iniettato il virus nel cervello dei topi, prendendo di mira la corteccia entorinale, e hanno sezionato il cervello degli animali per identificare le cellule che emettevano fluorescenza verde. Usando microelettrodi, hanno poi dimostrato che l'applicazione di un campo magnetico alle sezioni del cervello attiva Magneto in modo che le cellule producano impulsi nervosi.

Per determinare se Magneto può essere utilizzato per manipolare l'attività neuronale negli animali vivi, hanno iniettato Magneto nelle larve di pesce zebra, prendendo di mira i neuroni nel tronco e nella coda che normalmente controllano una risposta di fuga. Hanno quindi collocato le larve di pesce zebra in un acquario magnetizzato appositamente costruito e hanno scoperto che l'esposizione a un campo magnetico induceva manovre di avvolgimento simili a quelle che si verificano durante la risposta di fuga. (Questo esperimento ha coinvolto un totale di nove larve di pesce zebra e le analisi successive hanno rivelato che ogni larva conteneva circa 5 neuroni che esprimono Magneto.)

In un esperimento finale, i ricercatori hanno iniettato Magneto nello striato di topi che si comportano liberamente, una struttura cerebrale profonda contenente neuroni produttori di dopamina che sono coinvolti nella ricompensa e nella motivazione, quindi hanno inserito gli animali in un apparato diviso in sezioni magnetizzate e non magnetizzate. I topi che esprimono Magneto hanno trascorso molto più tempo nelle aree magnetizzate rispetto ai topi che non lo hanno fatto, perché l'attivazione della proteina ha fatto sì che i neuroni striatali che la esprimevano rilasciassero dopamina, in modo che i topi trovassero gratificante in quelle aree. Ciò dimostra che Magneto può controllare a distanza l'attivazione dei neuroni nel profondo del cervello e anche controllare comportamenti complessi.

Il neuroscienziato Steve Ramirez dell'Università di Harvard, che usa l'optogenetica per manipolare i ricordi nel cervello dei topi, afferma che lo studio è " cazzuto ".
"I precedenti tentativi [di usare i magneti per controllare l'attività neuronale] avevano bisogno di più componenti per far funzionare il sistema: iniettare particelle magnetiche, iniettare un virus che esprime un canale sensibile al calore, [o] fissare la testa dell'animale in modo che una bobina potesse indurre cambiamenti nel magnetismo", spiega. "Il problema con un sistema multi-componente è che c'è così tanto spazio per ogni singolo pezzo da scomporre."
"Questo sistema è un singolo ed elegante virus che può essere iniettato in qualsiasi parte del cervello, il che rende tecnicamente più facile e meno probabile che si scompongano campane e fischietti in movimento", aggiunge, "e la loro attrezzatura comportamentale è stata progettata in modo intelligente per contenere magneti. se del caso, in modo che gli animali possano muoversi liberamente”.
La "magnetogenetica" è quindi un'importante aggiunta alla cassetta degli attrezzi dei neuroscienziati, che sarà indubbiamente sviluppata ulteriormente e fornirà ai ricercatori nuovi modi di studiare lo sviluppo e la funzione del cervello.

Riferimento

Wheeler, MA, et al . (2016). Controllo magnetico geneticamente mirato del sistema nervoso. Naz. Neurosci ., DOI: 10.1038/nn.4265 [ Riassunto ]

martedì 11 dicembre 2018

Optogenetica, studio evoluzione e applicazioni

Optogenetica, studio evoluzione e applicazioni 

Sa Defenza 

"L’optogenetica è un tecnica molto recente che permette di studiare il cervello di mammiferi ed altri animali, la nascita risale alla metà degli anni 2000 e si basa su ricerche fatte negli anni ’70 su come certe proteine conosciute come rodopsine funzionino come pompe di ioni attivate dalla luce, la parte proteica che effettivamente reagisce allo stimolo si chiama opsina da qui il nome optogenetica."  ultimavoce/optogenetica-cura-malattie-cervello/

Le proteine ​​sensibili alla luce consentono agli scienziati di attivare o disattivare i neuroni in modo selettivo con una precisione senza precedenti. L'introduzione di queste proteine ​​in cellule coltivate o nel cervello di animali vivi consente di studiare la struttura e la funzione delle reti neurali. Questi strumenti "optogenetici" mantengono anche la promessa clinica, con la possibilità di modulare l'attività dei circuiti cerebrali coinvolti in disturbi neurologici o di ripristinare la perdita della vista.

I metodi tradizionali per l'analisi funzionale dei neuroni si sono basati sulla stimolazione diretta da piccoli elettrodi, sebbene l'efficacia sia indebolita dalla limitata precisione spaziale e temporale con cui le singole cellule possono essere mirate selettivamente. Come tale, la recente comparsa di strumenti optogenetici - interruttori geneticamente codificati che consentono ai neuroni di essere accesi o spenti con lampi di luce - promette di rivoluzionare lo studio di come i neuroni operano singolarmente e come membri di reti più grandi, e potrebbe infine offrire nuove speranze per i pazienti che soffrono di disturbi visivi o di disturbi neurologici come l'epilessia o il morbo di Parkinson.



Fig. 1: Rappresentazione schematica dell'azione di channelrhodopsina e halorhodopsina su cellule neurali. L'attivazione con luce blu apre il canale (channelrhodopsina), permettendo agli ioni di sodio di attivare il neurone 'on'; la luce gialla (su halorhodopsina) introduce ioni di cloruro, disattivano il neurone.

© Per gentile concessione di Gary Carlson / Science Photo Library





Accensioni e spegnimenti

A livello di base, il sistema nervoso può essere pensato come un circuito elettrico altamente complesso. Ogni neurone contiene una varietà di proteine ​di pompa e canale che controllano il flusso di ioni attraverso la sua membrana, mantenendo una potenziale membrana negativa nel neurone a riposo. Segnali di attivazione, ad esempio da neurotrasmettitori, fanno sì che gli ioni caricati positivamente fluiscano nella cellula dall'ambiente esterno attraverso queste proteine ​​del canale, causando la depolarizzazione della membrana. A una certa soglia, questo innesca un potenziale d'azione - un rapido afflusso di ioni di sodio che inverte efficacemente la tensione all'interno della cellula, dando inizio a una reazione a catena di afflusso di ioni sodio che si propaga lungo la lunghezza dell'assone, causando infine il rilascio di neurotrasmettitori che stimolano o inibiscono la produzione di impulsi elettrici nei neuroni vicini.

I microelettrodi si sono storicamente dimostrati utili per la stimolazione diretta (meno per l'inibizione) dei neuroni negli studi neurofisiologici, sebbene il basso limite di risoluzione imposto da questo regime sperimentale abbia lasciato i neuroscienziati affamati di alternative. Lo sviluppo di neurotrasmettitori "in gabbia" - modificati chimicamente per rimanere inattivi a meno che non siano attivati ​​dall'illuminazione laser - e canali ionici foto-commutabili modificati chimicamente hanno permesso notevoli miglioramenti nella precisione per studi funzionali, sebbene con possibilità limitate di applicazione.

Tuttavia, la vera rivoluzione è arrivata con la scoperta della channelrhodopsina delle proteine ​​alghe, che consente l'afflusso di ioni positivi in ​​risposta all'illuminazione con luce blu per agire come un interruttore "acceso" 1 ( Fig. 1 ). Pochi anni dopo, gli scienziati hanno riconosciuto il potenziale della halo-rodopsina della proteina arcaica, che innesca l'influsso di ioni cloro caricati negativamente in risposta alla luce gialla e quindi iperpolarizza la cellula, per agire come un interruttore "spento" 2 . Entrambe queste proteine ​​possono essere facilmente introdotte nelle cellule bersaglio mediante varie tecniche, consentendo agli scienziati di attivare e disattivare in modo rapido e preciso i singoli neuroni senza la necessità di ulteriori farmaci o sostanze chimiche.
Controllo dei circuiti neurali con la luce

Sebbene questo campo dell'optogenetica sia relativamente nuovo, gli scienziati hanno già fatto notevoli progressi nella mappatura dei circuiti cerebrali funzionali su lunghe distanze - ad esempio, mappando i processi neuronali che collegano i due emisferi della corteccia cerebrale nei topi. Altri studi preliminari hanno applicato questo approccio allo studio dei disturbi del cervello, utilizzando halorhodopsina e channelrhodopsina per caratterizzare i circuiti neurali presi di mira dalla stimolazione cerebrale profonda, che è una strategia terapeutica efficace ma poco conosciuta per la malattia di Parkinson in stadio avanzato.

Attualmente sono in corso molti sforzi per perfezionare le tecniche optogenetiche. Sebbene i virus offrano un mezzo efficace e clinicamente applicabile per la consegna dei geni che codificano queste rodopsine, è ancora un processo laborioso sviluppare costrutti che massimizzino l'efficienza della consegna e dell'espressione genica. Inoltre, sebbene la rodopsina e l'halorodopsina del canale naturalmente funzionino bene, vi è un suggerimento che le versioni modificate di queste proteine ​​potrebbero offrire una migliore sensibilità alla luce e quindi una commutazione più rapida. Saranno necessarie migliori modalità di erogazione della luce per migliorare l'accuratezza e l'efficienza delle strategie optogenetiche 3; Le alternative oggetto dell'inchiesta comprendono serie di diodi emettitori di luce (LED) indirizzabili separatamente che coprono efficacemente più settori cerebrali di interesse e sistemi di illuminazione a infrarossi che possono penetrare in profondità all'interno dei tessuti densi del cervello.


Neuroscienza guidata da laser

Le metodologie optogenetiche fondamentali sono ben consolidate; avendo dimostrato che queste rodopsine attivate dalla luce sono tollerate e funzionali nel cervello dei mammiferi, gli scienziati sono ora concentrati sull'uso di questi strumenti per la ricerca di base e clinica.

Le scoperte nella scienza dei materiali ora consentono la coltivazione di neuroni in modelli predeterminati complessi. La capacità di stimolare o silenziare le singole cellule in modo selettivo all'interno di queste culture ingegnerizzate, in combinazione con reagenti che consentono la visualizzazione diretta dell'attività neuronale, promette di fornire intuizioni che potrebbero informare la progettazione di reti neurali artificiali basate sui principi naturali alla base della struttura e della funzione cerebrale .






Fig. 2: mappatura automatizzata basata sulla luce della corteccia motoria del topo. Una configurazione sperimentale. Topi transgenici anestetizzati sono stimolati dal raggio laser. La risposta del motore viene rilevata dagli elettrodi elettromiografici (EMG). b fetta di tessuto cerebrale incorporato in agarosio mirata da un laser di stimolazione. c Profondità di intensità dell'area illuminata mentre il raggio passa attraverso l'agarosio e attraverso la superficie corticale.


Anche l'ambiente complesso del cervello vivente è alla portata di queste tecniche 4 . Ad esempio, è ora possibile utilizzare i "tubi luminosi" per fornire illuminazione a determinate aree del cervello del mouse, attivare circuiti olfattivi, indurre il movimento dei baffi o attivare i centri motori per attivare l'attività fisica ( Fig. 2 ) 5 , 6 . Questi successi nei modelli animali sono solo un preludio a un obiettivo a più lungo termine: la terapia genica optogenetica negli esseri umani. Gli studi hanno già dimostrato che la sensibilità alla luce può essere ripristinata sui topi con deficit di fotorecettore, fornendo il gene channelrhodopsina nelle cellule della retina 7 , 8. Alla fine, i sistemi di somministrazione virale potrebbero consentire strategie terapeutiche simili negli esseri umani per curare la cecità derivante dalla degenerazione maculare e da altri disturbi - un'alternativa promettente agli approcci terapeutici basati su impianti più invasivi.

È in corso anche il lavoro precoce usando optogenetica per migliorare il trattamento del morbo di Parkinson 9. La stimolazione cerebrale profonda utilizza elettrodi piccoli per l'eccitazione mirata di determinati settori cerebrali, ma soffre di una mancanza di risoluzione spaziale e di una tendenza a causare l'inattivazione involontaria dei neuroni non bersaglio. Pertanto, l'uso di fattori optogenetici potrebbe fornire un miglioramento della precisione molto necessario, con una risoluzione su scala micrometrica anziché su scala millimetrica. In linea di principio, un approccio simile potrebbe essere applicato per trattare l'epilessia, utilizzando halorhodopsina per consentire l'inibizione selettiva delle regioni cerebrali coinvolte nell'insorgenza delle crisi. Il trattamento di questi e di altri disordini neurologici potrebbe, ad esempio, teoricamente comportare l'associazione di una strategia di terapia genica attentamente predisposta e un dispositivo impiantabile per la stimolazione optogenetica.

L'optogenetica offre già grandi opportunità per la ricerca di base delle neuroscienze, come è già stato dimostrato da molti laboratori in tutto il mondo; anche se le applicazioni biomediche devono ancora affrontare sfide e rischi imprevedibili, queste aree di ricerca offrono grandi promesse per la ridefinizione delle strategie terapeutiche neurologiche in futuro.

Anche se il canale cationico ridotto alla luce channelrhodopsina2 (ChR2) è usato come il principale strumento optogenetico in centinaia di laboratori neurobiologicamente orientati in tutto il mondo, poco si sa del meccanismo molecolare di base. Gli scienziati del Max Planck Institute of Biophysics di Francoforte hanno recentemente dimostrato che ChR2 è una pompa protonica con perdita di luce, per cui la perdita rappresenta le proprietà del canale ( Feldbauer, K. et al., Proc. Natl Acad. Sci. USA 106 , 12317 -12322, 2009 ) .

RIFERIMENTI

Nagel, G. et al.
Channelrhodopsin-2, a directly light-gated cation-selective membrane channel.
Proc. Natl. Acad. Sci. USA 100, 13940–13945 (2003).
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Twophoton excitation of channelrhodopsin-2 at saturation.
Proc. Natl. Acad. Sci. USA 106, 15025–15030 (2009).
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Millisecond-timescale optical control of neural dynamics in the nonhuman primate brain.
Neuron 62, 191–198 (2009).
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Petreanu, L. et al.
Channelrhodopsin-2- assisted circuit mapping of long-range callosal projections.
Nature Neurosci. 10, 663–668 (2007).
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Ayling, O. G. et al.
Automated light-based mapping of motor cortex by photoactivation of channelrhodopsin-2 transgenic mice.
Nature Methods 6, 219–224 (2009).
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Bi, A. et al.
Ectopic expression of a microbial-type rhodopsin restores visual responses in mice with photoreceptor degeneration.
Neuron 50, 23–33 (2006).
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Lagali, P. S. et al.
Light-activated channels targeted to ON bipolar cells restore visual function in retinal degeneration.
Nature Neurosci. 11, 667–675 (2008).
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Gradinaru, V. et al.
Optical deconstruction of Parkinsonian neural circuitry.
Science 324, 354–359 (2009).
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